В современной жизни кролик – домашний питомец, явление далеко не редкое. Большое количество крольчат ежедневно приобретают на птичьих рынках и в зоомагазинах. Людей (чаще всего детей) привлекает маленький размер, доброта и общительность этих зверьков.
Однако, физиологические особенности, такие как половое созревание и половое поведение в целом, способны сильно затруднить общение с пушистым питомцем, создать дискомфорт в квартире, а явиться причиной расставания с любимцем.
Кролики известны своей склонностью к быстрому половому созреванию, массовому размножению, что является одним из способов выживания вида Oryctolagus cuniculus (кролик европейский) в природе.
Достигнув половой зрелости в возрасте 3-4 месяцев, крольчиха способна регулярно (каждые 1-2 месяца) приносить большое потомство и находиться в состоянии беременности большую часть своей жизни.
Самцы постоянно проявляют половое поведение, агрессивность, борьбу за самок, что так же важно для продолжения рода.
Став домашним, декоративным питомцем, кролик, тем не менее, не утратил своих инстинктов. Именно этим объясняется то, что приобретенный в зоомагазине пушистый комочек, такой ласковый и добрый поначалу, после достижения возраста 3-4 месяцев (или несколько позже), резко меняет свое поведение и характер. Так на нем отражается половое созревание.
Независимо от пола, кролик становится агрессивным, кусается, метит территорию, гремит решеткой клетки, стучит лапами, грызет мебель и раздирает ткани (шторы, покрывала и т.д.). В некоторых случаях – бросается на хозяев, пытается оцарапать и укусить.
Не стоит в этих ситуациях обижаться и наказывать зверя. Это его естественное стремление завоевать место в «стае», проявление резкого повышения уровня половых гормонов в крови.
При условии проживания вашего питомца в городской квартире, чаще всего в одиночку (если у вас нет планов создать дома филиал кроликофермы), гуманным является освобождение питомца от половых инстинктов. Причем, чем раньше вы это сделаете, тем меньше риск формирования у него половой доминанты поведения.
Проблемы возникают и если у вас дома живет разнополая или однополая пара (или группа) кроликов или кролик делит жилплощадь с животными других видов (кошки, морские свинки, маленькие собачки). Ко всем своим соседям кролик будет подходить, прежде всего, с «половой» точки зрения.
В этот момент на помощь владельцу и приходит ветеринарный врач, который способен путем проведения относительно несложных хирургических операций по удалению половых желез разрешить все перечисленные проблемы.
С учетом того, что официально аннотированных гормональных препаратов для подавления функции половых желез кроликов в настоящее время в России нет, операция остается основным путем.
После проведения операции у кролика в течение нескольких недель постепенно (от значительно снижения до полного прекращения) исчезают описанные проблемы поведения. Питомец становится спокойнее, общительнее, перестает метить территорию, легче идет на контакт.
Следует различать операции, проводимые у самцов и самок.
Кастрация (орхидэктомия) самца – удаление семенников. Относительно простая, не полостная операция, которая проводиться под общей (газовой) анестезией с дополнительным местным обезболиванием в области вмешательства. Риск применения средств для наркоза и послеоперационных осложнений минимален. Шов достигает размера 1-2 см. Чаще всего он не требует ухода и снятия. Послеоперационный уход практически отсутствует.
Стерилизация
(фактически кастрация, овариогистероэктомия) самки – удаление яичников, рогов матки и большей части ее тела. Более сложная, полостная операция, требующая глубокой анестезии. Проводится с применением газового наркоза и дополнительного медикаментозного обезболивания. Послеоперационный уход может требовать обработки швов, курса антибиотикотерапии (редко), защиты шва от разгрызания.
Преимущества кастрации (стерилизации) складываются из:
- отсутствия выраженного полового поведения;
- отсутствия нежелательного потомства;
- отсутствия синдрома «ложной беременности» у крольчих;
- снижение риска получения инфицированных кусанных ран, вследствии конфликтов между кроликами или кроликом и другим животным.
- профилактики патологии (нарушения, дистоции) родовой деятельности;
- снижения риска развития воспалительных процессов (мастита) и новообразований молочных желез;
- отсутствие риска развития новообразований и воспаления матки (пиометры) у самок
- отсутствие риска развития новообразований и абсцессов мошонки и семенников у самцов.
- отсутствие финансовых трат и потери времени, возникающих при лечении описанных выше патологий.
- удлиняется срок жизни кролика.
Риски и негативные последствия:
- анестезиологический риск – вероятность гибели кролика во время и в первые сутки после операции из-за наличия скрытых патологии внутренних органов или индивидуальной (повышенной) чувствительности к наркозу.
При использовании газового (ингаляционного) наркоза данные риск не высок (менее 1%);
- саморазгрызание кроликом операционных швов. Данная проблема мало актуальна для кроликов, т.к. именно данные животные практически никогда не проявляют интереса ко шву (при небольшом размере операционной раны, обычно 2-4 см);
- удаление половых желез способствует набору лишней массы и развитию ожирения. Проблема существует. Однако, следует заметить, что она характерна и для некастрированных животных, т.к. в условиях содержания в квартире создаются оптимальные условия (малая подвижность, избыточное кормления) для набора массы за счет жировых отложений. Физических нагрузок и кормления преимущественно сеном и овощами достаточно для профилактики ожирения (только начинать профилактику следует с момента приобретения кролика).
Противопоказаниями для подобных операций являются:
- племенная ценность животного;
- возраст старше 4 лет (при отсутствии прямых показаний);
- острые или хронические заболевания (прежде всего, сердечно-сосудистой и дыхательной систем).
Таким образом, кастрация (стерилизация) кролика, особенно в раннем возрасте, решает для владельца массу проблем - сохраняет здоровье кролика, удлиняет продолжительность жизни питомца, способствует психологическому комфорту в семье.
Ветеринарный врач Казаков Артем Аркадьевич
Многие владельцы переживают, как их любимец перенесет оперативное вмешательство, для которого необходим наркоз.
Риск анестезии у кроликов – ключевые факторы
Имеется много факторов, которые могут повлиять на риск анестезии у кроликов. Среди них особенно выделяются
- стрессы,
- ряд предшествующих заболеваний,
- гипоксия.
Благодаря клиническому осмотру перед процедурой можно установить текущее состояние животного. Взвешивание поможет рассчитать дозировку препаратов, вводимых зверькам. Благодаря современному оборудованию, качественному и точному расчету дозы и наблюдению удается максимально безопасно.
Предварительный клинический осмотр
Благодаря клиническому осмотру, удается установить общее состояние животного перед анестезией. Особи, находящие в шоке, гипотензии или дегитратированные, требуют пристального внимания – специалист вводит таким кроликам питательную жидкость внутривенным или внутрикостным методом.
У кроликов не возникает рвотного рефлекса, и в результате, можно производить анестезию практически . Уже в течение 1-2 часов в их ротовой полости не останется частиц еды, а в желудке будет достаточно места.
После анестезии животному требуется постоянный приток кислорода в легкие. Благодаря оксигенации, можно существенно снизить риски проявления гипоксии. Осуществить подачу воздуха можно путем кислородной маски, с помощью назальных или эндотрахеальных трубок и через канал, вставленный в глотку.
Благодаря эндотрахеальной интубации, у животных существенно снижается риск длительной задержки дыхания, и можно вводить кислород в легкие. Это позволит избежать смертности. Также, данная процедура, в случае осложнений, позволит произвести искусственную легочную вентиляцию.
Интубирование животных
Чтобы сделать интубирование кролику, важно учитывать анатомические особенности их трахеи, полости рта и носоглотки. учитывают малый объем легких и делают процедуру так, чтобы избежать гипоксии у зверька. В сравнении с брюшной областью, легкие этих животных очень маленькие – их объем равен не более 5-6 мл/кг. Благодаря движению диафрагмы, они дышат – легкие работают не за счет мышц межреберной части организма. В специалист следит, чтобы органы брюшка животного не давили на диафрагму.
Пульсоксиметр
В качестве элемента анестезиологического оборудования применяют пульсоксиметр. Идеальное место для его крепления – язык кролика. Но данные действия будут невозможными, если мордочка будет под кислородной маской. Четкий сигнал будет поступать с основания хвоста или паховых складок, но для этого потребуется выщипать шерсть. Также в качестве дополнительного оборудования используется ректальный зонд.
-- [ Страница 2 ] --
В крови определяли количество эритроцитов, содержание в них гемоглобина, СОЭ, цветной показатель, количество лейкоцитов и изучали лейкограмму по общепринятым в гематологии методикам.
Кровь для получения сыворотки брали из яремной вены в сухие пробирки до введения препаратов, через 24 часа, 1, 3, 7 и 14 суток после проведения опыта.
В сыворотке крови определяли: количество глюкозы, общего белка, активность АсАТ и АлАТ, концентрацию общего билирубина, мочевины, креатинина с помощью биохимического анализатора - полуавтомата BioChem SA.
Электрокардиографические исследования проводили при помощи электрокардиографа ЭК 14 Т, запись осуществляли во втором отведении; оценку проводили общепринятым в кардиологии методом.
Орхидэктомию у кролей поводили закрытым способом.
Ультразвуковые исследования органов брюшной полости кроликов проводили с помощью портативного ветеринарного ультразвукового сканера PU 2200 Vet до введения препаратов, через 10 минут после введения 2% раствора ксилазина гидрохлорида, золетила, а также их комбинации через 10, 30, 60, 90, 120, 150 и 180 минут по разработанной нами методике.
Морфологическую картину органов брюшной полости оценивали при вскрытии кроликов на разных сроках исследования: без применения рометара и золетила (контрольная группа), через 30 минут после введения указанных препаратов, через 1 сутки после оперативного вмешательства и через 7 суток после общего обезболивания.
Для гистологических исследований кусочки органов фиксировали в 10% нейтральном формалине, гистосрезы готовили на санном микротоме толщиной 5-7 мкм, окрашивали гематоксилином и эозином.
Статистическая обработка цифрового материала результатов исследования была осуществлена методом вариационной статистики с использованием пакета прикладных программ Microsoft Excel XP, выведением M, m, коэффициента достоверности Р с учетом критерия Стьюдента.
Степень достоверности показателей относительно таковых до опыта, отмеченных * были меньше 0,05.
3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
3.1. Подбор препаратов и оценка степени общей
анестезии у кроликов
Проведенные исследования позволили определить наиболее оптимальный вариант общей анестезии для кроликов. Во всех случаях оказалась оправданной премедикация 2% раствором ксилазина гидрохлорида.
Введение рометара сопровождалось изменениями, характерными для препаратов данной группы. Через 5 - 10 минут после введения препарата животные опускали голову, наблюдались седация и снижение болевой чувствительности, однако, на некоторые манипуляции, связанные с фиксацией в боковом положении, кролики оказывали достаточно активное сопротивление.
Внутривенное струйное введение 1% водной эмульсии пропофола вызывало хорошо выраженную релаксацию мышц конечностей, но болевая чувствительность сохранялась, что исключало возможность проведения хирургических вмешательств.
Ингаляция эфиром вызывала отсутствие рефлексов и болевой чувствительности в течение 10 минут, тонуса мышц челюстей и век – 15 минут. Через 30 минут кролики пытались вставать, а через 40 минут могли самостоятельно изменять положение тела в пространстве.
Применение золетила-50 в качестве мононаркоза обеспечило мгновенную релаксацию мышц и отсутствие болевой чувствительности в течение 5 минут. Через 30 минут восстанавливалась двигательная активность кроликов, а через 1 час они могли самостоятельно передвигаться.
На фоне премедикации рометаром введение золетила – 50 как внутримышечно, так и внутривенно позволяло достичь хирургической стадии наркоза. Через 25-30 минут после внутримышечного и 30-35 минут после внутривенного введения восстанавливалась болевая чувствительность, через 45 – 60 минут кролики пытались вставать, а самостоятельно передвигаться могли через 90 минут.
3.2. Влияние препаратов для обезболивания и их комбинаций на клинический статус, морфологические, биохимические показатели крови и сердечную деятельность кроликов
3.2.1. Влияние рометара и эфира на организм кроликов
Премедикация рометаром вызывала незначительное повышение температуры тела кроликов первой подгруппы этой группы, которое сменилось понижением значения этого показателя после применения эфира и сохранялось в течение трех часов.
Через 10 минут после введения рометара отмечалось урежение пульса и частоты дыхательных движений, которые через 10 минут после применения эфира для наркоза сменялись учащением, но уже через 30 минут после -отмечалась тенденция к снижению, а через сутки значения частоты сердечных сокращений и дыхательных движений приближались к первоначальным.
В морфологическом составе крови кроликов этой подгруппы в течение часа отмечалась тенденция к снижению числа эритроцитов и содержания в них гемоглобина. После премедикации рометаром незначительно увеличивалось содержание лейкоцитов, которое сменялось уменьшением их числа после применения эфира. Через 3 часа после обезболивания регистрировали резкий подъем количества лейкоцитов, и только на седьмые сутки этот показатель восстанавливался до исходного уровня (рис. 1, 2).
Изменения в лейкограммах касались в основном количества сегментоядерных, палочкоядерных форм нейтрофилов и лимфоцитов.
Через 10 минут после внутримышечного введения рометара появилась тенденция к повышению процента сегментоядерных нейтрофилов, которая сохранялась в течение трех часов и после ингаляции эфира. Изменения количества лимфоцитов были подобны изменениям сегментоядерных нейтрофилов, но с противоположным знаком (рис. 3, 4).
В биохимическом составе сыворотки крови отмечалось снижение содержания глюкозы, активности АлАТ и АсАТ, повышение концентрации общего билирубина, мочевины, количества креатинина и общего белка. Первоначального уровня практически все показатели достигали через 14 суток (таб.2).
После введения рометара отмечалось урежение частоты сердечных сокращений, удлинение как систолического, так и диастолического периодов и значительное снижение амплитуды зубца R. Ингаляция эфира приводила к снижению продолжительности интервалов Q-T и R-R, деформации зубца Р, предшествовавшему не каждому комплексу QRS, увеличению амплитуды зубца Т, который становился отрицательным, снижению амплитуды зубца R.
Через 24 часа показатели электрокардиограмм практически не отличались от первоначальных.
3.2.2. Влияние золетила на организм кроликов
При изучении показателей, характеризующих клинический статус подопытных кроликов второй подгруппы первой группы, установлено понижение температуры тела, урежение сердечных сокращений и дыхательных движений, прослеживающихся в течение 3 часов после введения препарата и достигающих первоначального уровня через 1 сутки.
После внутривенного введения золетила наблюдалось снижение числа эритроцитов, содержания в них гемоглобина. Через сутки эти показатели практически не отличались от данных, полученных до введения препарата. Указанные изменения сопровождались увеличением числа лейкоцитов, сохранявшимся в течение трех суток (рис. 1, 2).
В лейкограммах отмечалось увеличение процентного содержания палочкоядерных нейтрофилов уже через час после введения животных в наркоз и на этом уровне сохранялось в течение трех суток. Через час от начала обезболивания увеличивалось число сегментоядерных нейтрофилов, что, как и у животных предыдущей подгруппы, приводило к снижению числа лимфоцитов и, наоборот, в те же сроки исследования (рис. 3, 4).
В течение трех суток после внутривенного введения золетила наблюдалось снижение уровня глюкозы и увеличение количества общего белка в сыворотке крови.
Через 10 минут после введения золетила отмечалось незначительное снижение частоты сердечных сокращений, снижение амплитуды зубца S в некоторых циклах. Через час в отдельных циклах отмечалась экстрасистолия, увеличение амплитуды зубцов Р и R, а зубец Т становился отрицательным. Увеличивалась продолжительность интервалов R-R и Q-T.
Через сутки показатели электрокардиограмм приближались к первоначальным.
3.2.3. Влияние рометара и золетила на организм кроликов
После введения золетила на фоне премедикации рометаром у кроликов начиналось снижение температуры тела, и через три часа достигало минимального уровня (35,2±0,36С).
Наблюдавшееся после введения рометара урежение пульса, после введения золетила сменялось кратковременной нормализацией, после чего вновь наблюдалась брадикардия. Описанные изменения сопровождались урежением дыхания. Через сутки значения этих показателей практически не отличались от доопытных.
Тенденция к снижению числа эритроцитов и содержания в них гемоглобина прослеживалась в течение часа после введения золетила и сменялась быстрым восстановлением количества эритроцитов, которое через три часа существенно не отличалось от данных, полученных до введения рометара и золетила (рис. 1).
В картине белой крови изменения были аналогичны таковым кроликов первой подгруппы этой группы, но с меньшей степенью выраженности.
Количество лейкоцитов через 10 минут после премедикации увеличивалось, а после введения золетила-50 – снижалось в течение 30 минут. Через три часа отмечалось увеличение содержания лейкоцитов, сменившееся снижением и достигающим на третьи сутки минимального значения, затем отмечалась тенденция к его повышению (рис. 2).
Изменения в лейкограммах были аналогичными таковым животных второй подгруппы, но выражены в меньшей степени. Через 10 минут после применения золетила-50 в крови появлялись юные нейтрофилы, которые в другие сроки исследования не обнаруживались в периферической крови кроликов этой подгруппы. Процентное содержание палочкоядерных форм нейтрофилов через 10 минут после премедикации снижалось. Через 10 минут после достижения хирургической стадии наркоза отмечалось повышение процента палочкоядерных нейтрофилов, которое продолжалось в течение 24 часов и только на седьмые сутки их число приближалось к исходному.
Количество сегментоядерных нейтрофилов через 10 минут после введения
Рисунок 1 - Изменения количества эритроцитов у Рисунок 2 - Изменения количества лейкоцитов у
кроликов второй группы, 1012/л кроликов второй группы, 109/л
Рисунок 3 - Изменения процентного содержания Рисунок 4 - Изменения процентного содержания
сегментоядерных нейтрофилов у кроликов лимфоцитов у кроликов второй группы
второй группы
Таблица 2 - Изменения биохимических показателей сыворотки крови кроликов
| № подгруппы | Сроки исследований | Глюкоза, ммоль/л | Мочевина, ммоль/л | Билирубин, мкмоль/л | Ал АТ, Е/л | Ас АТ, Е/л | Общий белок, г/л | Креатинин, мкмоль/л |
| 1 | До введения препаратов | 6,15 ± 0,86 | 4,95 ±1,09 | 2,06±0,61 | 55,6±2,88 | 16,2±3,96 | 64,31±3,29 | 122,8±8,35 |
| 1 сутки | 3,69±0,51* | 9,41±1,88* | 2,84±1,00 | 41,6±7,02* | 13,2±2,77 | 73,02±5,21* | 204,6±13,72* | |
| 3 суток | 3,07±0,86* | 8,08±1,55* | 3,87±0,72* | 49,0±5,43 | 16,2±6,22 | 72,98±5,24* | 218,8±15,04* | |
| 7 суток | 3,62±0,63* | 6,37±1,42 | 7,23±1,84* | 51,0±5,52 | 16,8±5,59 | 70,14±2,64* | 169,6±8,88* | |
| 14 суток | 6,18±0,70 | 4,98±0,88 | 2,13±0,55 | 55,2±2,77 | 16,2±3,63 | 64,28±3,42 | 123,6±5,94 | |
| 2 | До введения препаратов | 6,47±0,67 | 4,73±0,54 | 2,22±0,77 | 49,6±3,05 | 15,2±3,96 | 63,5±6,34 | 117,4±10,95 |
| 1 сутки | 3,13±0,47* | 2,82±0,43* | 3,99±0,63* | 64,6±7,86* | 11,8±3,7 | 73,3±9,31 | 140,86±9,65* | |
| 3 суток | 1,99±0,10* | 4,95±0,78 | 0,83±0,44* | 49,8±6,87 | 60,8±16,02* | 81,03±8,8* | 65,8±4,87* | |
| 7 суток | 3,18±0,31* | 5,31±0,59 | 2,5±0,84 | 50,4±4,34 | 46,4±10,88* | 77,04±8,46* | 104,00±11,60 | |
| 14 суток | 6,44±0,59 | 4,76±0,47 | 2,21±0,71 | 50,00±2,35 | 15,60±3,36 | 63,3±4,9 | 117,8±9,65 | |
| 3 | До введения препаратов | 5,44±0,66 | 7,08±2,45 | 2,71±1,29 | 57,6±11,74 | 14,2±2,28 | 59,54±2,18 | 110,0±23,8 |
| 1 сутки | 3,31±0,32* | 4,88±0,77 | 3,35±1,51 | 25,00±12,88* | 35,6±6,19* | 71,89±6,00* | 171,6±25,60* | |
| 3 суток | 3,44±1,22* | 5,97±2,52 | 2,68±1,17 | 44,00±16,72 | 17,8±2,59 | 68,45±5,01* | 155,00±35,04 | |
| 7 суток | 4,75±1,17 | 8,80±1,11 | 4,61±2,39 | 50,6±15,22 | 14,6±3,36 | 76,51±2,11* | 141,2±20,71 | |
| 14 суток | 5,46±0,74 | 7,14±2,39 | 2,69±1,18 | 57,8±11,39 | 14,2±2,39 | 59,74±3,15 | 116,8±19,92 |
Кролики отличаются от других лабораторных животных своим спокойствием и относительно слабым сопротивлением при фиксации. Привязывают их к специальным станкам или вивисекционным столам таким же образом, как кошек и собак. Следует иметь в виду, что при сильном запрокидывании головы у кроликов легко возникает смерть от удушья. Помощник может фиксировать кролика двумя руками, удерживая его левой рукой за кожу спины в области затылка, а правой - в области крестца или за задние конечности.
Удобен способ фиксации кроликов с помощью индивидуального ящика (бокса) с круглой прорезью в передней стенке или специального иммобилизационного станка. При этом голову животного выводят сквозь отверстие передней стенки наружу, а туловище размещают внутри станка (клетки, ящика; рис. 56). С помощью вставной дощечки можно сокращать внутренние размеры бокса в зависимости от величины животного.
Фиксировать кролика можно и другими способами. Опеленать его туловище и конечности полотенцем или куском прочной материи или, сидя на стуле, зажать задние конечности животного между ног, а левой рукой удерживать за кожу в области спины или за голову, правая рука остается свободной для манипуляций.
Для вживления электродов в головной мозг кроликов используют специальный стереотаксический аппарат, надежно фиксирующий голову животного.
При выполнении экспериментальных работ на органе зрения можно воспользоваться устройством для фиксации кроликов и других животных, предложенным Э.М. Мироновой и соавт. (1976). Оно состоит из внешней и внутренней «труб» и позволяет надежно закрепить туловище и голову животного при свободном доступе к глазам.
В качестве роторасширителя для кроликов, при необходимости введения им желудочного зонда, Н.И. Ложкин (1968) рекомендует использовать преобразованный винтовой лабораторный зажим прямоугольной формы (рис. 57). К нижним поверхностям подвижной и неподвижной рамок зажима приклеивают две пластинки из органического стекла толщиной 5 мм (верхняя) и 19 мм (нижняя). На верхней поверхности подвижной пластинки и нижней поверхности неподвижной сделаны овальные углубления размером 2-3 мм для резцовых зубов соответственно верхней и нижней челюстей кролика. Фиксированному кролику шпателем приоткрывают рот, вставляют роторасширитель со сближенными верхней и нижней пластинками таким образом, чтобы верхние и нижние резцы попали в овальные углубления. Поворотом гайки увеличивают расстояние между рамками до максимального раскрытия полости рта. Резиновый зонд при использовании данного роторасширителя можно вводить без посторонней помощи.
Наркоз. Кролики весьма чувствительны к хлороформу и быстро погибают от него.
Небольшими концентрациями этилового эфира можно вызвать неглубокий наркоз. Для получения глубокого наркоза эфир следует добавлять небольшими порциями, осторожно. Необходимо помнить, что при одновременной даче большой дозы эфира может наступить остановка дыхания и смерть. Лучше пользоваться смесью эфира с кислородом.
Кролики хорошо переносят уретановый наркоз. Уретан вводят по 0,6-1 г на 1 кг массы внутрибрюшинно и внутримышечно (20- 40 %-й раствор).
Хлоралгидрат вводят в виде 10-12 %-го раствора внутривенно в дозе 100-150мг/кг или ректально в дозе 300-500 мг/кг. Смесь хлоралгидрата с одним из наркотических анальгетиков (промедолом, фентонилом, дроперидолом) вводят внутримышечно.
Для воспроизведения наркоза используют также барбитураты кратковременного (гексенал, тиопентал) и среднего (этаминал, барбамил) действия.